血液/细胞/组织基因组DNA提取试剂盒

273.00元

血液/细胞/组织基因组 DNA 纯化试剂盒 产品组成 GF304-02 GF304-03 (50 preps) (200 preps) 溶液 GA (Buffer GA) 15 ml 60 ml 溶液 BG (Buffer BG) 30ml 120ml 蛋白酶 K (20mg/ml) 1.1ml 4*1.1ml 漂洗液 PW (Buffer PW) 16ml（使用前请先加入 64ml 无水乙醇） 64ml（使用前请先加入 256ml 无水乙醇） 洗脱缓冲液 TB (Buffer TB) 15 ml 60 ml 吸附柱 CG1 (Spin Columns CG1) 50 个 200 个 收集管(2 ml) (Collection Tubes 2ml) 50 个 200 个 选配试剂红细胞裂解液（Red Cell Lysis Buffer 货号：GF1201-01）;RNase A (100mg/ml) 货号：GF0201-01) 储存条件该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保 存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预 热10 min，以溶解沉淀。 产品简介及特点本试剂盒采用可以特异性结合DNA 的离心吸附柱，和独特的缓冲液系统，能高效、专一吸附DNA，可有 效去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物,用来提取多种细胞中的基因组 DNA。不需要苯酚、氯仿等有机溶剂，安全方便；提取的基因组 DNA 片段大，纯度高，质量稳定可靠。根据不同的样本量和样本类型，可以提取的DNA 产量范围为 1-40ug。 使用本试剂盒回收的 DNA 可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、文库构建、Southern 杂交等实验。 注意事项 1. 样品应避免反复冻融，否则会导致提取的DNA 片段较小且提取量也下降。2. 若溶液 GA 或溶液BG 中有沉淀，可在 37℃水浴中重新溶解，摇匀后使用。 3. 所有离心步骤均为使用台式离心机，室温下离心。操作步骤 使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。1.处理材料a. 如提取材料为血液，可直接使用 200μl 新鲜、冷冻或加入各种抗凝剂的血液，不足 200 μl 可加溶液GA 补足；注意：如需处理更大体积血液，如 300μl-1 ml，应按以下步骤操作：在样品中加入 3 倍体积红细胞裂解液 （例如，300μl 血液加入 900μl 红细胞裂解液），颠倒混匀，室温放置 5 min，期间再颠倒混匀几次。10000 rpm(~11,500×g)离心 1 min（若离心机最高转速不允许，可 3000 rpm(~3,400×g)离心5 min），吸去上清，留下白细胞沉淀，加 200 μl 溶液 GA，振荡至彻底混匀。 红细胞裂解液本公司另外有售（货号：GF1201-01），可根据需要来决定购买。 b. 如果处理血样为禽类、鸟类、两栖类或更低级生物的抗凝血液，其红细胞为有核细胞，因此处理量 5- 20μl，可加溶液 GA 补足 200 μl 后进行下面的裂解步骤。c. 贴壁培养的细胞应先处理为细胞悬液，然后 10,000 rpm(~11,200×g)离心 1 min，倒尽上清，加 200 μl 溶液GA，振荡至彻底悬浮。d. 动物组织（脾组织用量应少 10 mg）应先打碎处理为细胞悬液，然后 10,000rpm(~11,200×g)离心 1 min，倒尽上清，加 200 μl 缓冲液 GA，振荡至彻底悬浮。注意：如果需要去除RNA，可加入 4 μl RNaseA（100 mg/ml）溶液（客户自备，目录号：GF0201-01）， 振荡 15 sec，室温放置 5 min。2. 加入 20μl Proteinase K 溶液，混匀。 a.提取血液基因组时，加入Proteinase K，混匀，即可继续进行下一步。 b.提取细胞基因组时，加入Proteinase K，混匀，即可继续进行下一步。 c.提取组织基因组时，加入 Proteinase K 混匀后，在 56℃放置，直至组织溶解，简短离心以去除管盖内壁的水珠，再进行下一步骤。注意：不同组织裂解时间不同，通常需 1-3 h 即可完成（鼠尾需要消化过夜），每小时颠倒混合样品 2-3次，用水浴振荡器也可。3. 加入 200ul 溶液 BG，充分颠倒混匀，70℃放置 10 min,溶液应变清亮，简短离心以去除管盖内壁的水珠。注意：加入溶液 BG 时可能会产生白色沉淀，一般 70℃放置时会消失,不会影响后续实验。如溶液未变清亮，说明细胞裂解不彻底，可能导致提取 DNA 量少和提取出的DNA 不纯。当血液体积≤200μl 且没有采用红细胞裂解处理，或是样本储存条件不佳，水浴后颜色可能为深褐色，注意溶液中没有团块等沉淀。4. 加入 200ul 无水乙醇，充分振荡混匀 15sec，此时可能会出现絮状沉淀，简短离心以去除管盖内壁的水珠。 5. 将上一步所得溶液和絮状沉淀都加入一个吸附柱CG1 中（吸附柱放入收集管中），12,000 rpm (~13,400×g)离心 30 sec，倒掉废液，将吸附柱CG1 放回收集管中。 6. 向吸附柱CG1 中加入 300μl 溶液BG，12,000rpm (~13,400×g)离心 30 sec，倒掉废液，将吸附柱 CG1 放入收集管中。注意：这一步骤对于清除内切酶是必不可少的，以防止污染。7. 向吸附柱CG1 中加入700μl 漂洗液PW（使用前请先检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm (~13,400×g)离心 30 sec，倒掉废液，将吸附柱CG1 放入收集管中。 8. 重复操作步骤 7。9. 将吸附柱CG1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，倒掉废液。将吸附柱 CG1 置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的漂洗液。注意：这一步的目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除，漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、 PCR 等）实验。10. 将吸附柱 CG1 转入一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加 50-200μl 洗脱缓冲液TB，室温放置 2-5 min，12,000 rpm (~13,400×g)离心 2 min，将溶液收集到离心管中。注意：洗脱液体积不应少于 50μl，体积过小影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有很大影响。若用ddH2O 做洗脱液应保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解。为增加基因组 DNA 的得率，可将离心得到的溶液再加入吸附柱 CG1 中,室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 min。

通用型DNA纯化回收试剂盒

944.00元

储存条件该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。产品简介及特性本试剂盒采用独特的缓冲液体系和离心吸附柱，既能从TAE或TBE琼脂糖凝胶中回收100 bp-20 kb大小的DNA片段，又能用于直接纯化PCR产物，满足多种实验需要。整个纯化过程可在15分钟完成、不需进行苯酚萃取及酒精沉淀、纯化的DNA无盐类或大分子的污染。如果回收前DNA量为1-5ug，建议选用超薄DNA产物纯化试剂盒GF203或超薄琼脂糖凝胶回收试剂盒DF208，推荐洗脱液体积20-50ul。a.使用相同的溶液，可进行三种不同的应用（PCR 产物纯化、DNA 产物纯化、胶体回收）。b.每一离心管柱可处理达 150ul 的 DNA 溶液或 PCR 反应产物，DNA 回收率可达 80%~95%。c.可用于以 TAE 或 TBE 缓冲液配制的琼脂糖凝胶的 DNA 回收，DNA 回收率可达 60~90%。注意事项1.电泳时应使用新的电泳缓冲液，以免影响电泳和回收效果。2.如下一步实验要求较高，则应尽量使用 TAE 电泳缓冲液。3.切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对 DNA 造成损伤。4.洗脱缓冲液加量应根据回收前DNA量来决定：如回收前DNA只有1-5μg左右（推荐选用GF203或GF208超薄型试剂盒），加20-50μl洗脱液；如回收前有5-15μg左右DNA，加30-100μl洗脱缓冲液；如回收前有15-30μg左右DNA，加50-300μl洗脱缓冲液。5.回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。6.对于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以适当的增加吸附和洗脱的时间。操作步骤使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。一、从 PCR 反应液或酶切反应液中回收 DNA 1.完成 PCR 扩增或其他酶切反应操作后，移取反应混合液（含有预纯化的 DNA）至干净的离心管。 2.加入 3 倍体积的溶液 PC 至反应混合液中（如 50ul 反应混合液加入 150ul 的结合液）,震荡混合均匀。 3.将吸附柱放入收集管中，移取上一步混合液至吸附柱，室温放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的悬液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.加入 700ul 的漂洗液至吸附柱中，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃悬液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 5.重复操作步骤 4。 6.将吸附柱 CB1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶切、PCR 等实验 7.将吸附柱 CB1 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加适量的洗脱缓冲液 TB，室温放置 2 min。12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 30 μl，体积过少影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20°C，以防 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA 溶液收集到离心管。 二、从琼脂糖凝胶中回收 DNA 片段 1.完成电泳后，将单一的目的 DNA 条带从琼脂糖凝胶中切下（尽量切除多余部分）放入干净的离心管中，称取重量（如果凝胶重为 0.1 g，其体积可视为 100 μl）。 2.向胶块中加入 2 倍体积（如果琼脂糖凝胶浓度＞2%，则加入 3 倍体积）的溶液 PC，60℃水浴孵育 5-15 min或更久，其间不断温和地上下翻转离心管，直至胶块充分溶解（若胶块的体积过大，可事先将胶块切成碎块）。 注意：胶块完全溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱，因为吸附柱在室温时结合 DNA 的能力较强。 3.将吸附柱放入收集管中，移取上一步溶胶液至吸附柱，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.可选步骤：向吸附柱 CB1 加入 400ul 的溶液 PC，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB1 放回收集管中（此步骤可去除残余的琼脂糖凝胶，以避免纯化的 DNA 进行酶切反应时出现抑制现象）。 5.向吸附柱加入 700ul 的漂洗液，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃滤液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 6.重复操作步骤 5。 7.将吸附柱 CB1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶切、PCR 等实验。 8.将吸附柱 CB1 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加适量洗脱液 TB，静置 2 分钟，室温放置 2 min，12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 30 μl，体积过少影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA 溶液收集到离心管。

通用型DNA纯化回收试剂盒

152.00元

储存条件该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。产品简介及特性本试剂盒采用独特的缓冲液体系和离心吸附柱，既能从TAE或TBE琼脂糖凝胶中回收100 bp-20 kb大小的DNA片段，又能用于直接纯化PCR产物，满足多种实验需要。整个纯化过程可在15分钟完成、不需进行苯酚萃取及酒精沉淀、纯化的DNA无盐类或大分子的污染。如果回收前DNA量为1-5ug，建议选用超薄DNA产物纯化试剂盒GF203或超薄琼脂糖凝胶回收试剂盒DF208，推荐洗脱液体积20-50ul。a.使用相同的溶液，可进行三种不同的应用（PCR 产物纯化、DNA 产物纯化、胶体回收）。b.每一离心管柱可处理达 150ul 的 DNA 溶液或 PCR 反应产物，DNA 回收率可达 80%~95%。c.可用于以 TAE 或 TBE 缓冲液配制的琼脂糖凝胶的 DNA 回收，DNA 回收率可达 60~90%。注意事项1.电泳时应使用新的电泳缓冲液，以免影响电泳和回收效果。2.如下一步实验要求较高，则应尽量使用 TAE 电泳缓冲液。3.切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对 DNA 造成损伤。4.洗脱缓冲液加量应根据回收前DNA量来决定：如回收前DNA只有1-5μg左右（推荐选用GF203或GF208超薄型试剂盒），加20-50μl洗脱液；如回收前有5-15μg左右DNA，加30-100μl洗脱缓冲液；如回收前有15-30μg左右DNA，加50-300μl洗脱缓冲液。5.回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。6.对于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以适当的增加吸附和洗脱的时间。操作步骤使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。一、从 PCR 反应液或酶切反应液中回收 DNA 1.完成 PCR 扩增或其他酶切反应操作后，移取反应混合液（含有预纯化的 DNA）至干净的离心管。 2.加入 3 倍体积的溶液 PC 至反应混合液中（如 50ul 反应混合液加入 150ul 的结合液）,震荡混合均匀。 3.将吸附柱放入收集管中，移取上一步混合液至吸附柱，室温放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的悬液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.加入 700ul 的漂洗液至吸附柱中，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃悬液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 5.重复操作步骤 4。 6.将吸附柱 CB1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶切、PCR 等实验 7.将吸附柱 CB1 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加适量的洗脱缓冲液 TB，室温放置 2 min。12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 30 μl，体积过少影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20°C，以防 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA 溶液收集到离心管。 二、从琼脂糖凝胶中回收 DNA 片段 1.完成电泳后，将单一的目的 DNA 条带从琼脂糖凝胶中切下（尽量切除多余部分）放入干净的离心管中，称取重量（如果凝胶重为 0.1 g，其体积可视为 100 μl）。 2.向胶块中加入 2 倍体积（如果琼脂糖凝胶浓度＞2%，则加入 3 倍体积）的溶液 PC，60℃水浴孵育 5-15 min或更久，其间不断温和地上下翻转离心管，直至胶块充分溶解（若胶块的体积过大，可事先将胶块切成碎块）。 注意：胶块完全溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱，因为吸附柱在室温时结合 DNA 的能力较强。 3.将吸附柱放入收集管中，移取上一步溶胶液至吸附柱，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.可选步骤：向吸附柱 CB1 加入 400ul 的溶液 PC，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB1 放回收集管中（此步骤可去除残余的琼脂糖凝胶，以避免纯化的 DNA 进行酶切反应时出现抑制现象）。 5.向吸附柱加入 700ul 的漂洗液，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃滤液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 6.重复操作步骤 5。 7.将吸附柱 CB1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶切、PCR 等实验。 8.将吸附柱 CB1 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加适量洗脱液 TB，静置 2 分钟，室温放置 2 min，12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 30 μl，体积过少影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA 溶液收集到离心管。

普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒

784.00元

储存条件该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。产品简介本试剂盒采用可以高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统，从TAE或TBE琼脂糖凝胶上回收DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质。可回收100 bp-30kb大小的片段，回收率可达80%以上。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为10 μg。使用本试剂盒回收的 DNA 可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。如果回收前 DNA 量为 1-5ug，建议选用 DF208 超薄琼脂糖凝胶回收 kit，推荐洗脱液体积 20-50ul。产品特点快速：整个操作过程快速方便，几十分钟即可完成回收工作。多样：可以回收单链、双链DNA片段以及环状质粒DNA。高效：独特的离心柱和精心配制的缓冲液，可大量回收到高纯度的目的DNA。注意事项1.电泳时应使用新的电泳缓冲液，以免影响电泳和回收效果。2.如下一步实验要求较高，则应尽量使用 TAE 电泳缓冲液。3.切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对 DNA 造成损伤。4.回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。5.对于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以适当的增加吸附和洗脱的时间。操作步骤使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。1.完成电泳后，将单一的目的 DNA 条带从琼脂糖凝胶中切下（尽量切除多余部分）放入干净的离心管中，称取重量（如果凝胶重为 0.1 g，其体积可视为 100 μl）。2.向胶块中加入 2 倍体积（如果琼脂糖凝胶浓度＞2%，则加入 3 倍体积）的溶液 PN，60℃水浴孵育 5-15 min或更久，其间不断温和地上下翻转离心管，直至胶块充分溶解（若胶块的体积过大，可事先将胶块切成碎 块）。 注意：胶块完全溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱，因为吸附柱在室温时结合 DNA 的能力较强。 3.将吸附柱 CB2 放入收集管中，移取上一步溶胶液至吸附柱，室温放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB2 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.可选步骤：向吸附柱 CB2 加入 400ul 的溶液 PN，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB2 放回收集管中（此步骤可去除残余的琼脂糖凝胶，以避免纯化的 DNA 进行酶切反应时出现抑制现象）。 5.向吸附柱 CB2 加入 700ul 的漂洗液，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃滤液，将吸附柱 CB2 放回收集管中。 6.重复操作步骤 5。 7.将吸附柱 CB2 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。 8.将吸附柱 CB2 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加 30-100ul 洗脱缓冲液 TB，室温放置 2min。12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 30 μl，体积过少影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20°C，以防 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA 溶液收集到离心管。

普通琼脂糖凝胶DNA回收试剂盒

216.00元

储存条件该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。产品简介本试剂盒采用可以高效、专一结合DNA的硅基质材料和独特的缓冲液系统，从TAE或TBE琼脂糖凝胶上回收DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质。可回收100 bp-30kb大小的片段，回收率可达80%以上。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为10 μg。使用本试剂盒回收的 DNA 可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。如果回收前 DNA 量为 1-5ug，建议选用 DF208 超薄琼脂糖凝胶回收 kit，推荐洗脱液体积 20-50ul。产品特点快速：整个操作过程快速方便，几十分钟即可完成回收工作。多样：可以回收单链、双链DNA片段以及环状质粒DNA。高效：独特的离心柱和精心配制的缓冲液，可大量回收到高纯度的目的DNA。注意事项1.电泳时应使用新的电泳缓冲液，以免影响电泳和回收效果。2.如下一步实验要求较高，则应尽量使用 TAE 电泳缓冲液。3.切胶时，紫外照射时间应尽量短，以免对 DNA 造成损伤。4.回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。5.对于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以适当的增加吸附和洗脱的时间。操作步骤使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。1.完成电泳后，将单一的目的 DNA 条带从琼脂糖凝胶中切下（尽量切除多余部分）放入干净的离心管中，称取重量（如果凝胶重为 0.1 g，其体积可视为 100 μl）。2.向胶块中加入 2 倍体积（如果琼脂糖凝胶浓度＞2%，则加入 3 倍体积）的溶液 PN，60℃水浴孵育 5-15 min或更久，其间不断温和地上下翻转离心管，直至胶块充分溶解（若胶块的体积过大，可事先将胶块切成碎 块）。 注意：胶块完全溶解后将胶溶液温度降至室温再上柱，因为吸附柱在室温时结合 DNA 的能力较强。 3.将吸附柱 CB2 放入收集管中，移取上一步溶胶液至吸附柱，室温放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB2 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.可选步骤：向吸附柱 CB2 加入 400ul 的溶液 PN，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的滤液，将吸附柱 CB2 放回收集管中（此步骤可去除残余的琼脂糖凝胶，以避免纯化的 DNA 进行酶切反应时出现抑制现象）。 5.向吸附柱 CB2 加入 700ul 的漂洗液，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃滤液，将吸附柱 CB2 放回收集管中。 6.重复操作步骤 5。 7.将吸附柱 CB2 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。 8.将吸附柱 CB2 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加 30-100ul 洗脱缓冲液 TB，室温放置 2min。12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 30 μl，体积过少影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20°C，以防 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA 溶液收集到离心管。

大量DNA产物纯化试剂盒

240.00元

储存条件 该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。 产品简介 本试剂盒采用独特的离心吸附柱纯化酶切、PCR等反应溶液中的DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质，回收100 bp-20 kb DNA片段，回收率可达80%以上。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为20μg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。 产品特点 快速：整个操作过程只需十几分钟，节省时间。 多样：可以回收单链、双链DNA片段以及环状质粒DNA。 高效：独特的离心柱和精心配制的缓冲液，可大量回收到高纯度目的DNA。 注意事项 1.本试剂盒适用于无选择性的回收溶液中所有 DNA 片段，如需选择性回收特定片段，同时去除其他不同大小片段，请选择胶回收试剂盒。 2.回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。 3.对于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以适当的增加吸附和洗脱的时间。 操作步骤 使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签；所有离心步骤均为使用台式离 心机在室温下离心。 1.完成 PCR 扩增或其他酶切反应操作后，移取反应混合液（含有预纯化的 DNA）至干净的离心管。 2.加入 3 倍体积的溶液 PB 至反应混合液中（如 50ul 反应混合液加入 150ul 的结合液）,震荡混合均匀。 3.将吸附柱 CB1 放入收集管中，移取上一步混合液至吸附柱，室温放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g ) 离心 1 分钟，丢弃收集管中的悬液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.向吸附柱 CB1 中加入 700ul 的漂洗液，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃悬液，将吸附柱 CB1 放回收集管中。 5.重复操作步骤 4。 6.将吸附柱 CB1 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。 7.将吸附柱 CB1 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加适量 50-300ul 洗脱缓冲液 TB，室温放置 2 min。12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 50 μl，体积过少影响回收效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20℃，以防 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA 溶液收集到离心管。

普通DNA产物纯化试剂盒

688.00元

储存条件 该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。 产品简介 本试剂盒采用独特的离心吸附柱纯化酶切、PCR等反应溶液中的DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质，回收100 bp-20 kb DNA片段，回收率可达80%以上。每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为10 μg。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。 如果回收前DNA量为1-5ug，建议选用GF203超薄DNA产物纯化kit，推荐洗脱液体积20-50ul。 产品特点 快速：整个操作过程只需十几分钟，节省时间。 多样：可以回收单链、双链DNA片段以及环状质粒DNA。 高效：独特的离心柱和精心配制的缓冲液，可大量回收到高纯度目的DNA。 注意事项 1.本试剂盒适用于无选择性的回收溶液中所有 DNA 片段，如需选择性回收特定片段，同时去除其他不同大小片段，请选择胶回收试剂盒。 2.回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。 3.对于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以适当的增加吸附和洗脱的时间。 操作步骤 使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签；所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。 1.完成 PCR 扩增或其他酶切反应操作后，移取反应混合液（含有预纯化的 DNA）至干净的离心管。 2.加入 3 倍体积的溶液 PB 至反应混合液中（如 50ul 反应混合液加入 150ul 的结合液）,震荡混合均匀。 3.将吸附柱放入收集管中，移取上一步混合液至吸附柱，室温放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的悬液，将吸附柱 CB2 放回收集管中。 注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.向吸附柱 CB2 加入 700ul 的漂洗液，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃悬液，将吸附柱 CB2 放回收集管中。 5.重复操作步骤 4。 6.将吸附柱 CB2 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。 7.将吸附柱CB2置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加30-100洗脱缓冲液TB，室温放置2 min。12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积不应小于 30 μl。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，室温放置 2 min，12,000 rpm(~13,400×g)离心 2 min，将 DNA溶液收集到离心管。

超薄DNA产物纯化试剂盒

240.00元

储存条件该试剂盒置于室温（15-25℃）干燥条件下，可保存18个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。产品简介本试剂盒采用独特的离心吸附柱纯化酶切、PCR等反应溶液中的DNA片段，同时除去蛋白质、其它有机化合物、无机盐离子及寡核苷酸引物等杂质，回收100 bp-10 kb DNA片段，回收率可达80%以上，可用最少20ul的洗脱液进行洗脱，每个离心吸附柱每次可吸附的DNA量为5 μg，特别适用于较少样品量的回收。使用本试剂盒回收的DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、文库筛选、连接和转化等实验。产品特点快速：整个操作过程只需十几分钟，节省时间。多样：可以回收单链、双链DNA片段以及环状质粒DNA。高效：独特的离心柱和精心配制的缓冲液，可大量回收到高纯度目的DNA。注意事项1.本试剂盒适用于无选择性的回收溶液中所有 DNA 片段，如需选择性回收特定片段，同时去除其他不同大小片段，请选择胶回收试剂盒。2.回收率与初始 DNA 量和洗脱体积有关，初始量越少、洗脱体积越少，回收率越低。3.对于<100 bp 和>10 kb 的 DNA 片段可以适当的增加吸附和洗脱的时间。操作步骤使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签；所有离心步骤均为使用台式离心机在室温下离心。1.完成 PCR 扩增或其他酶切反应操作后，移取反应混合液（含有预纯化的 DNA）至干净的离心管。2.加入 3 倍体积的溶液 PB 至反应混合液中（如 50ul 反应混合液加入 150ul 的结合液）,震荡混合均匀。3.将吸附柱放入收集管中，移取上一步混合液至吸附柱，室温放置 2 min，以 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1 分钟，丢弃收集管中的悬液，将吸附柱 CB3 放回收集管中。注意：若样本体积超过 700ul，可分次加入并重复此步骤。 4.向吸附柱 CB3 加入 700ul 的漂洗液 PW，静置 1 分钟以平衡管柱膜，于 12,000 rpm(~13,400×g )离心 1分钟，丢弃悬液，将吸附柱 CB3 放回收集管中。 5.重复操作步骤 4。 6.将吸附柱 CB3 放回收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心 2 分钟，将吸附柱开盖置于室温放置数分钟，以去除、晾干残余的漂洗液。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR 等）实验。 7.将吸附柱 CB3 置于一个干净离心管中，向吸附膜中间位置悬空滴加 20-50ul 洗脱缓冲液 TB，室温放置 2min。12,000 rpm (~13,400×g )离心 2 min 收集 DNA 溶液。 注意：洗脱体积最低不应小于 20 μl，体积过少会影响回收的效率。洗脱液的 pH 值对于洗脱效率有较大影响，若后续做测序，需使用 ddH2O 做洗脱液，并保证其 pH 值在 7.0-8.5 范围内，pH 值低于 7.0 会降低洗脱效率；且 DNA 产物应保存在-20℃，以防止 DNA 降解。为了提高 DNA 的回收量，可将离心得到的溶液重新加回离心吸附柱中，再次离心管。

高纯度质粒大提试剂盒

544.00元

无内毒素质粒小提中量试剂盒

464.00元

储存条件 本试剂盒在室温（15-25℃）干燥条件下，可保存12个月；更长时间的保存可置于2-8℃。（注意：当低温贮存时，使用前应先将试剂盒内的溶液在室温中放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以平衡溶液温度）。单独包装的RNase A在室温可稳定保存12个月以上。加入RNase A后的溶液P1应置于2-8℃保存，可稳定保存6个月。产品简介 本试剂盒采用独特的硅胶膜吸附技术，高效专一地结合质粒DNA。同时采用特殊的去内毒素溶液ER和过滤柱CS1，可有效的去除内毒素、蛋白等杂质；整个提取过程仅需1个小时，方便快捷。以下操作步骤适用于提取5-15 ml过夜培养的大肠杆菌,质粒提取得率和质量与宿主菌的种类和培养条件，细胞的裂解，质粒拷贝数，质粒的稳定性，抗生素等因素有关。使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于转染多种细胞及各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、连接等实验。注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（将试剂盒中提供的 RNase A 全部加入），混匀，置于 2-8℃保存。2.使用前先检查溶液 P2 和 P3 是否出现浑浊，如有混浊现象，可在 37℃水浴中加热几分钟，即可恢复澄清。3.所有离心步骤均为使用台式离心机室温下进行离心，速度为 12,000 rpm (~13,400×g )。4.去内毒素溶液 ER 在多次开盖使用后，可能会有细微的颜色变化，不影响最终质粒提取效率和纯度。5.提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于 10 kb 的大质粒，应加大菌体使用量，同时按比例增加 P1、P2、P3 的用量，洗脱缓冲液应在 65-70℃预热。可以适当的延长吸附和洗脱的时间，以增加提取效率。操作步骤 使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。 本产品仅供科研使用，请勿用于临床诊断及其它用途1.取5-15 ml过夜培养的菌液加入离心管中，12,000 rpm (~13,400×g ) 离心1 min，尽量吸除上清。注意：菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中, 菌体量以能够充分裂解为佳，过多的菌体裂解不充分会降低质粒的提取效率。 2.向留有菌体沉淀的离心管中加入500 μl溶液P1 （请先检查是否已加入RNaseA），使用移液器吸吐或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。注意：请务必彻底悬浮细菌沉淀，如果有未彻底混匀的菌块，会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。 3.向离心管中加入500 μl溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。注意：温和地混合，不要剧烈震荡，以免污染基因组DNA。此时菌液应变得清亮粘稠，所用时间不应超过5 min，以免质粒受到破坏。如果未变得清亮，可能由于菌体过多，裂解不彻底，应减少菌体量。 4.向离心管中加入500 μl溶液P3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀，然后室温放置10 min左右，12,000 rpm (~13,400×g ) 离心10 min，此时在离心管底部形成沉淀。注意：P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清。 5.将上一步收集的上清液分次加入过滤柱CS1（过滤柱放入收集管中），12,000 rpm(~13,400×g ) 离心2min，小心地将过滤离心后收集管中得到的溶液分次加入吸附柱CP2中（吸附柱放入收集管中），（如果过滤柱中有残余的液体，说明步骤4的上清中杂质过多，可以延长离心的时间；如果离心后收集管底部有少量的沉淀，尽量地吸取上清）。6.12,000 rpm (~13,400×g ) 离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP2放入收集管中。7.向吸附柱CP2加入750 ml 去内毒素溶液ER（已经加入异丙醇），静置2分钟使管柱膜平衡，室温12,000rpm (~13,400×g)离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱重新放回收集管中。8.向吸附柱CP2中加入700 μl漂洗液PW（请先检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g ) 离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP2放入收集管中。注意：加入漂洗液PW后，如果室温静置2-5 min，有助于更好地去除杂质。 9.重复操作步骤8.10.将吸附柱CP2重新放回收集管中，12,000 rpm (~13,400×g ) 离心2 min，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱CP2开盖，置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的乙醇。 11.将吸附柱CP2置于一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加100-300 μl洗脱缓冲液TB，室温放置2 min，12,000 rpm (~13,400×g ) 离心1 min将质粒溶液收集到离心管中。注意：洗脱缓冲液体积不应少于100μl，体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响，若后续做测序，需使用ddH2O做洗脱液，并保证其pH值在7.0-8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率。且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。为了增加质粒的回收率，可将得到的溶液重新加入吸附柱中，室温放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 离心2 min，将质粒溶液收集到离心管中。

质粒小提中量试剂盒

240.00元

储存条件该试剂盒置于室温(15-25℃)干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。第一次使用前将RNase A加入溶液P1中，混匀后置于2-8℃保存，可稳定保存12个月以上。单独包装的RNase A 在室温可稳定保存12个月以上。产品简介本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞，通过离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司新型材料，高效、专一吸附DNA，可去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物。以下操作步骤适用于提取5-15 ml过夜培养的大肠杆菌，质粒提取得率和质量与宿主菌的种类和培养条件，细胞的裂解，质粒拷贝数，质粒的稳定性，抗生素等因素有关。使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、连接、转化、文库筛选、体外翻译、转染一些常规的传代细胞等。注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（将试剂盒中提供的 RNase A 全部加入），混匀，置于 2-8℃保存。2.使用前先检查溶液 P2 和 P3 是否出现浑浊，如有混浊现象，可在 37℃水浴中加热几分钟，即可恢复澄清。3.注意不要直接接触溶液 P2 和 P3，使用后应立即盖紧盖子。4.所有离心步骤均为使用台式离心机室温下进行离心，速度为 12,000 rpm (~13,400×g )。5.提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。如果所提质粒为低拷贝质粒或大于 10 kb 的大质粒，应加大菌体使用量，同时按比例增加 P1、P2、P3 的用量，洗脱缓冲液应在 65-70℃预热。可以适当的延长吸附和洗脱的时间，以增加提取效率。操作步骤使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。1.取5-15 ml过夜培养的菌液加入离心管中，12,000 rpm (~13,400×g )离心1 min，尽量吸除上清。注意：菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中。收集的菌体量以能够充分裂解为佳，菌体过多裂解不充分会降低质粒的提取效率。 2.向留有菌体沉淀的离心管中加入500 μl溶液P1（请先检查是否已加入RNase A），使用移液器吸吐或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。 注意：如果有未彻底混匀的菌块，会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。 3.向离心管中加入500 μl溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。 注意：温和地混合，不要剧烈震荡，以免污染基因组DNA。此时菌液应变得清亮粘稠，所用时间不应超过5min，以免质粒受到破坏。如果菌液没有变清亮，可能是由于菌体过多，裂解不彻底，应减少菌体量。 4.向离心管中加入500 μl溶液P3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀。12,000 rpm (~13,400×g ) 离心10 min，此时在离心管底部形成沉淀。 注意：P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清。 5.将上一步收集的上清液分次加入吸附柱CP2中(吸附柱放入收集管中，其容量为750-800ul)，注意尽量不要吸出沉淀。12,000 rpm (~13,400×g )离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP2放入收集管中。 6.向吸附柱CP2中加入700 μl漂洗液PW（请先检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g )离心1 min，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP2放入收集管中。 7.重复操作步骤6。 8.吸附柱CP2放入收集管中，12,000 rpm(~13,400×g )离心2 min，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱CP2开盖，置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的乙醇。 9.将吸附柱CP2置于一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位悬空滴加100-300 μl洗脱缓冲液TB，室温放置2-5 min，12,000 rpm(~13,400×g )离心2 min，将质粒溶液收集到离心管中。 注意：洗脱缓冲液体积不应少于100μl，体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响，若后续做测序，需使用ddH2O做洗脱液，并保证其pH值在7.0-8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率。且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。为了增加质粒的回收率，可将得到的溶液重新加入吸附柱中，室温放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 离心2min，将质粒溶液收集到离心管中。

高纯度质粒小提试剂盒

240.00元

储存条件 该试剂盒置于室温(15-25℃)干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。第一次使用前将RNase A加入溶液P1中，混匀后置于2-8℃保存，可稳定保存12个月以上。单独包装的RNase A 在室温可稳定保存12个月以上。 产品简介 本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞，再通过离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司新型材料，高效、专一吸附DNA。由于增加了过滤柱，与普通的提取方法相比，本试剂盒可去除杂质蛋白及细胞中其他有机化合物，适用于提取1-5 ml过夜培养的大肠杆菌，质粒提取得率和质量与宿主菌的种类和培养条件，细胞的裂解，质粒拷贝数，质粒的稳定性，抗生素等因素有关。 使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于转染多种细胞及各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、连接等实验。 注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（将试剂盒中提供的 RNase A 全部加入），混匀，置于 2-8℃保存。 2.使用前先检查溶液 P2 和 P3 是否出现浑浊，如有混浊现象，可在 37℃水浴中加热几分钟，即可恢复澄清。 3.注意不要直接接触溶液 P2 和 P3，使用后应立即盖紧盖子。 4.所有离心步骤均为使用台式离心机室温下进行离心，速度为 12,000 rpm (~13,400×g)。 5.提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。 操作步骤 使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。 1.取1-5 ml过夜培养的菌液加入离心管中，12,000 rpm (~13,400×g )离心1 min，尽量吸除上清（菌液较多时可以通过几次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中）。 2.向留有菌体沉淀的离心管中加入250 μl溶液P1 （请先检查是否已加入RNase A），使用移液器吸吐或涡旋振荡器彻底悬浮细菌细胞沉淀。 注意：如果有未彻底混匀的菌块，会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。 3.向离心管中加入250 μl溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。 注意：温和地混合，不要剧烈震荡，以免打断基因组DNA，造成提取的质粒中混有基因组DNA片断。此时菌液应变得清亮粘稠，所用时间不应超过5 min，以免质粒受到破坏。如果未变得清亮，可能由于菌体过多，裂解不彻底，应减少菌体量。 4.向离心管中加入250 μl溶液P3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀，此时会出现白色絮状沉淀。12,000 rpm (~13,400×g ) 离心10 min，用移液器小心地将上清转移到过滤柱CS1（过滤柱放入收集管中），注意尽量不要吸出沉淀。 注意：P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上清。 5.12,000 rpm (~13,400×g )离心2 min，小心地将离心后收集管中得到的溶液转移到吸附柱CP1中（吸附柱放入收集管中），（如果过滤柱中有残余的液体说明步骤4吸取的上清中杂质过多，可以延长离心的时间； 如果离心后收集管底部有少量的沉淀，尽量的吸取上清）。 6.12,000 rpm (~13,400×g ) 离心30-60 sec，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP1放入收集管中。 7.向吸附柱CP1中加入700 μl漂洗液PW（请先检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g ) 离心30-60 sec，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP1放入收集管中。 8.重复操作步骤7。 9.将吸附柱CP1放入收集管中，12,000 rpm (~13,400×g ) 离心2 min，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去除。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱CP1开盖，置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的乙醇。 10.将吸附柱CP1置于一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位滴加50-100 μl洗脱缓冲液TB，室温放置2 min，12,000 rpm (~13,400×g) 离心2 min将质粒溶液收集到离心管中。 注意：洗脱缓冲液体积不应少于50μl，体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响，若后续做测序，需使用ddH2O做洗脱液，并保证其pH值在7.0-8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率。且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。为了增加质粒的回收率，可将得到的溶液重新加入吸附柱中，室温放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 离心2 min，将质粒溶液收集到离心管中。 低拷贝或大质粒（ >10kb）提取 如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10 kb的大质粒，应加大菌体使用量，使用5-10 ml过夜培养物，同时按照比例增加P1、P2、P3的用量，洗脱缓冲液TB应在65-70℃水浴预热，在吸附和洗脱时可以适当的延长时间，以增加提取效率。其它步骤相同。

质粒小提试剂盒-200次

544.00元

储存条件 该试剂盒置于室温(15-25℃)干燥条件下，可保存12个月，更长时间的保存可置于2-8℃。2-8℃保存条件下，若溶液产生沉淀，使用前应将试剂盒内的溶液在室温放置一段时间，必要时可在37℃水浴中预热10 min，以溶解沉淀。第一次使用前将RNase A加入溶液P1中，混匀后置于2-8℃保存，可稳定保存12个月以上。单独包装的RNase A 在室温可稳定保存12个月以上。 产品简介 本试剂盒采用碱裂解法裂解细胞，再通过离心吸附柱在高盐状态下特异性地结合溶液中的DNA。离心吸附柱中采用的硅基质材料为本公司新型材料，高效、专一吸附DNA。以下操作步骤适用于提取1-5ml过夜培养的大肠杆菌，质粒提取得率和质量与宿主菌的种类和培养条件，细胞的裂解，质粒拷贝数，质粒的稳定性，抗生素等因素有关。 使用本试剂盒提取的质粒DNA可适用于各种常规操作，包括酶切、PCR、测序、连接、转化、文库筛选、体外翻译、转染一些常规的传代细胞等。 注意事项 请务必在使用本试剂盒之前阅读此注意事项。 1.溶液 P1 在使用前先加入 RNase A（将试剂盒中提供的 RNase A 全部加入），混匀，置于 2-8℃保存。 2.使用前请先检查溶液 P2 和 P3 是否出现浑浊，如有混浊现象，可在 37℃水浴中加热几分钟，即可恢复澄 清。 3.注意不要直接接触溶液 P2 和 P3，使用后应立即盖紧盖子。 4.所有离心步骤均为使用常规台式离心机室温下进行离心，速度为 12,000 rpm(~13,400×g )。 5.提取的质粒量与细菌培养浓度、质粒拷贝数等因素有关。 操作步骤 使用前请先在漂洗液PW中加入无水乙醇，加入体积请参照瓶上的标签。 1.取1-5 ml过夜培养的菌液加入离心管中，12,000 rpm(~13,400×g ) 离心1 min，尽量吸除上清（菌液较多时可以通过多次离心将菌体沉淀收集到一个离心管中）。 2.向留有菌体沉淀的离心管中加入250 μl溶液P1（请先检查是否已加入RNase A），使用移液器吸吐或涡旋振荡器彻底悬浮细菌沉淀。 注意：如果有未彻底混匀的菌块，会影响裂解，导致提取量和纯度偏低。 3.向离心管中加入250 μl溶液P2，温和地上下翻转6-8次使菌体充分裂解。 注意：温和地混合，不要剧烈震荡，以免打断基因组DNA，造成提取的质粒中混有基因组DNA片断。此时 菌液应变得清亮粘稠，所用时间不应超过5 min，以免质粒受到破坏。如果未变得清亮，可能由于菌体 过多，裂解不彻底，应减少菌体量。 4.向离心管中加入250 μl溶液P3，立即温和地上下翻转6-8次，充分混匀，此时将出现白色絮状沉淀。12,000 rpm (~13,400×g )离心10 min。 注意：P3加入后应立即混合，避免产生局部沉淀。如果上清中还有微小白色沉淀，可再次离心后取上 清。 5.将上一步收集的上清液用移液器转移到吸附柱CP1中 （吸附柱放入收集管中），注意尽量不要吸出沉淀。12,000 rpm (~13,400×g)离心30-60 sec，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP1放入收集管中。 6.向吸附柱CP1中加入700 μl漂洗液PW（请先检查是否已加入无水乙醇），12,000 rpm(~13,400×g )离心30-60 sec，倒掉收集管中的废液，将吸附柱CP1放入收集管中。 7.重复操作步骤6。 8.将吸附柱CP1放入收集管中,12,000 rpm (~13,400×g) 离心2 min，目的是将吸附柱中残余的漂洗液去 除。 注意：漂洗液中乙醇的残留会影响后续的酶反应（酶切、PCR等）实验。为确保下游实验不受残留乙醇的影响，建议将吸附柱CP1开盖，置于室温放置数分钟，以彻底晾干吸附材料中残余的乙醇。 9.将吸附柱CP1置于一个干净的离心管中，向吸附膜的中间部位滴加50-100 μl洗脱缓冲液TB，室温放置2min，12,000 rpm (~13,400×g) 离心2 min将质粒溶液收集到离心管中。 注意：洗脱缓冲液体积不应少于50μl，体积过小影响回收效率。洗脱液的pH值对于洗脱效率有很大影响，若后续做测序，需使用ddH2O做洗脱液，并保证其pH值在7.0-8.5范围内，pH值低于7.0会降低洗脱效率。且DNA产物应保存在-20℃，以防DNA降解。为了增加质粒的回收率，可将得到的溶液重新加入吸附柱中，室温放置2 min，12,000 rpm(~13,400×g) 离心2 min，将质粒溶液收集到离心管中。 低拷贝或大质粒（ >10kb）提取 如果所提质粒为低拷贝质粒或大于10 kb的大质粒，应加大菌体使用量，使用5-10 ml过夜培养物，同时按照比例增加P1、P2、P3的用量，洗脱缓冲液TB应在65-70℃水浴预热，在吸附和洗脱时可以适当的延长时间，以增加提取效率。其它步骤相同

Vipack 病毒包装转染试剂

360.00元

【操作方法】1. 对于贴壁细胞（以下均以6孔板为例，其它培养皿或培养板请根据相应面积换算）：a.将细胞培养于培养皿或培养板内，通常在铺板后1-2天内长到70-90%。 b. 在转染前1-2小时，吸去细胞培养液，更换为新鲜的不含抗生素的完全培养液2ml。c. 取2-4μg待转染的质粒DNA (质粒总体积不宜超过20μl，若有多种质粒请混匀)，以质量体积比1：3加入转染试剂6~12μl（如2μg待转染的质粒DNA加入转染试剂6μl）。d.混匀后，室温孵育3-5分钟。e. 把DNA-转染试剂混合物中加入500μl opti-MEM（若无opti-MEM可使用无血清无双抗的DMEM或1640，具体根据转染细胞使用的培养基）,充分混匀后静置10-15分钟。 f.后均匀滴加到整个6孔板内（加入前吸出原培养板中500μl培养基），并置于含5%二氧化碳的37ºC细胞培养箱内培养。 g. 在转染后4-6小时左右换液，更换为2ml新鲜的完全培养液，继续培养。h.通常在转染约24-48小时后就可以检测到转染基因的表达。2. 对于悬浮细胞： a. 离心收集悬浮细胞，用PBS洗涤一次。 b. 按照上面的步骤c)、d)、e）制备DNA-转染试剂-optiMEM混合物。c. 每106个细胞的沉淀，用500微升DNA-转染试剂-optiMEM混合物重新悬浮，室温放置15-20分钟。 d. 在一个6孔板孔内加入1.5ml完全培养液，然后加入来自上一步的细胞-500微升DNA-转染试剂-optiMEM混合物，混匀。e. 在含5%二氧化碳的37ºC细胞培养箱内培养。 f. 根据实验要求和转染试剂对于不同细胞的毒性不同，在4-6小时后离心收集细胞，用PBS洗一次，然后用2毫升完全培养 液重新悬浮细胞，继续培养。 g. 通常在转染约24-48小时后就可以检测到转染基因的表达。

NewZOL LS 总RNA提取试剂(NewZOL LS Reagent) 200ml

890.00元

功能与使用方法与life品牌的Trizol LS相似 【保存条件】2-8℃长期保存【操作方法】I. 样本处理1. 组织样本处理：用匀浆器或其他类似设备匀化组织样本机械破坏装置，每 500μL 最多使用 50 mg 组织NewZOL LS。 对于 DNA 含量高的组织（例如脾脏），建议使用 25 mg 组织/ 500μL 试剂。 2. 贴壁细胞样本处理：除去细胞培养基，通过向培养皿（直径 3.5 cm，10 cm2）中加入至少 1 mL NewZOLLS 并通过反复吸移来确保完全裂解。（根据培养皿面积而不是细胞数计算试剂量。试剂量不足将导致分离的 RNA 受到 DNA 污染。残留的匀浆可以在-20 至-80°C 下保存至少一年，以备后用。） 3. 悬浮细胞样本处理：沉淀细胞，并通过添加 NewZOL LS 直接裂解。 每 5×106个细胞至少加入 500μLNewZOL LS，移液器吹打数次裂解细胞。（添加 NewZOL LS 之前请勿洗涤细胞，细胞洗涤可能会导致 RNA降解。） 4. 液体样本处理：每 200μL 液体样品中加入 500μL NewZOL LS 进行均质化和裂解。对于小于 200μL 的样品体积，请添加 500μLNewZOL LS 并加水至最终体积为 700μL。 5. 富含脂质样本处理：如上所述均质化富含脂质的样品。将样品以 12,000×g 离心 5 分钟。 离心后，样品顶部会出现一层脂肪。用移液器吸头尖端刺穿上层，然后将上清液转移到新管中。 II. RNA 提取1. 每使用 500μLNewZOL LS 的裂解液中加入 200μL 无 RNase 的水至裂解液中。剧烈摇动样品 15 秒钟。在室温下孵育 5 分钟。（对于包含 50 mg 组织/ 500μL NewZOL LS 的样品，建议在室温下孵育 15 分钟。） 2. 在室温下以12,000×g离心样品15分钟。含有DNA，蛋白质和多糖的半固体沉淀物形成在试管底部。RNA仍溶解在上清液中。 3. 将 500μL 上清液转移至新管中。 勿吸太干净防止污染，在 DNA /蛋白质沉淀上方保留一小部分上清液。（含有 DNA，蛋白质和多糖的沉淀物占匀浆-水混合物总量的约 10％。）4. 加入等体积异丙醇，上下颠倒混匀以沉淀 RNA，在室温下孵育样品 10 分钟。5. 将样品以 12,000×g 离心 10 分钟，除去并丢弃上清液。通常，在管的底部以白色沉淀的形式获得 RNA。对于脾脏样品，RNA 在试管底部形成凝胶状膜。用乙醇洗涤后，膜变得更可见。 6. 加入 500μL 75％ 乙醇（无 RNase 水配制）洗涤，轻弹管底使沉淀悬浮，上下颠倒混匀。对于较大的试管，按比例添加 75% 乙醇溶液。 7. 将沉淀以 8,000×g 的速度离心 3 分钟。移液去除沉淀中的乙醇，重复乙醇洗涤步骤一次。静置 5-10 分钟待乙醇挥发，无需过份干燥成固体，干燥成固体的 RNA 沉淀不易溶解 8. 将 RNA 沉淀溶于无 RNase 的水中，在室温下涡旋 3 分钟，以实现有效溶解。将得到的 RNA 进行检测或-65℃长期保存（若需更长时间保存请添加适量 RNA Chill（ES-8520））。 【注意事项】1. RNA 酶污染注意事项：a. 提取过程用品均经过去 RNA 酶处理：玻璃制品可以 150 °C 烘烤 4 小时 ，塑料制品可浸泡于 0.5M NaOH 溶液后用清水冲洗并高压灭菌，吸头及离心管类尽量使用一次性无酶吸头及离心管 b. 佩戴手套及口罩及护目镜：皮肤上常含有细菌和霉菌，可污染 RNA 制备，且同时是 RNA 酶来源，同时 New ZOL LS 对皮肤有一定毒性，建议佩戴手套及口罩及护目镜。 c. 尽量于通风橱内提取：避免吸入提取过程中有毒物质。2. 安全性问题：a. 本品在与皮肤接触及吞咽有毒性，可导致烧伤。与皮肤接触后，应立即用洗涤剂和大量水冲洗。如感到身体不适，应立即就医

30-300ul F3 可调八道移液器,半支消毒

2250.00元

产品规格：Each准确度：±5.00 to 1.0%Compatible Tips：Finntip：300, Flex 300颜色编码：橙色描述：Finnpipette F3 , 8-ch, 30-300µL通道数：8量程（公制）：30-300µL增量：1µL精密度：2.0 to 0.3%

BioFroxx ，2088GR500 ，酵母粉Yeast extract

200.00元

BioFroxx ，2275MG100 ，胶原酶II型Collagenase II 2-8度

228.00元

1M Tris-HCL溶液(pH7.0)(无酶)

270.00元

ED-9253-500ml 1M Tris-HCL溶液(pH7.0)(无酶) ，此产品为定制版，货期请询客服

DNA分子量标准 (250-15000 bp) DNA Ladder (250-15000 bp)

80.00元

DNA分子量标准 (250-15000 bp) DNA Ladder (250-15000 bp)产品简介：本产品为预混有1×上样缓冲液的即用型DNA分子量标准，由7条线状双链DNA条带组成，适用于对250-15000 bp的双链DNA分子大小的估算和粗略定量。条带组成：250、1000、2500、5000、7500、10000和15000 bp。其中2500 bp条带浓度较大，为20 ng/μl，其余条带浓度约为10 ng/μl。储存液成分：10 mM TrisCl (pH 8.4)，10 mM EDTA，0.02%溴酚兰，5%甘油使用说明:1. 建议用于0.5~1.0%的琼脂糖凝胶电泳，不推荐用于聚丙烯酰胺凝胶电泳；2. 电泳缓冲液可选用1x TAE 或0.5~1x TBE，电压6~8 v/cm 胶长，电泳时间30~60分钟；3. 根据上样孔宽度，用灭菌枪头吸取5ul本产品，加入上样孔中；4. 加入待检测DNA 样品后开始电泳；5. 电泳结束后，使用溴化乙啶（EB）或其它DNA 染料染色并观察电泳条带。注意事项:1. 经检测，本品室温放置三个月带型无变化；但建议低温保存，以防因操作不慎导致核酸酶污染而引起条带降解；2. 使用前请勿加热；3. 当电泳缓冲液缓冲能力下降时应及时更换电泳缓冲液，以免影响分辨效果。