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LentiV-X 慢病毒浓缩液（4×）-500ml
基本售价：1050.00元
Lentivirus Concentrate Solution, 4×【保存条件及效期】 4℃保存。 【用途】 本产品适用于从细胞培养液等无细胞生物样品中浓缩慢病毒，可浓缩 10-100 倍。 【使用方法】1. 将10cm培养皿的上清液收集到15ml无菌离心管中，低速离心弃细胞沉淀吸取上清液（注： 避免上清液中漂浮的部分细胞影响）； 2. 小心地将上清液转移到新的 50 ml 无菌离心管中； 3. 在 3 体积的上清液中加入 1 体积的病毒浓缩液（如 30ml 细胞上清液加入 10ml 病毒浓缩 液）4. 振动 60 秒以充分混匀（病毒浓缩液较粘稠，一定留意充分混匀），然后在 4℃环境以 60 转/分钟左右的恒速摇动孵育至少 4 小时 （过夜 4℃摇动孵育效果更好）5. 将管取出，于 4℃以 1600×g 转速离心 60 分钟 6. 小心除去上清液，不要干扰沉淀(注：沉淀的多少并不一定代表病毒数量，沉淀更多的是 细胞培养基中的血清蛋白及部分基因组 DNA。若沉淀量不明显，则残留少量液体后再 重悬) 7. 将病毒沉淀完全重悬于原来体积的 1/10〜1/20 或所需的培养基（无血清和抗生素）中， 轻轻上下吹打混匀 8. 分装并储存在-80 ℃直到使用（注：浓缩液使用前无菌 0.45µm 过滤除菌）； 【注意事项】 1. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 2. 本品为非无菌产品，因其成份较为粘稠无法较好过滤。
LentiV-X 慢病毒浓缩液（4×）
基本售价：390.00元
Lentivirus Concentrate Solution, 4×【保存条件及效期】 4℃保存。 【用途】 本产品适用于从细胞培养液等无细胞生物样品中浓缩慢病毒，可浓缩 10-100 倍。 【使用方法】1. 将10cm培养皿的上清液收集到15ml无菌离心管中，低速离心弃细胞沉淀吸取上清液（注： 避免上清液中漂浮的部分细胞影响）； 2. 小心地将上清液转移到新的 50 ml 无菌离心管中； 3. 在 3 体积的上清液中加入 1 体积的病毒浓缩液（如 30ml 细胞上清液加入 10ml 病毒浓缩 液）4. 振动 60 秒以充分混匀（病毒浓缩液较粘稠，一定留意充分混匀），然后在 4℃环境以 60 转/分钟左右的恒速摇动孵育至少 4 小时 （过夜 4℃摇动孵育效果更好）5. 将管取出，于 4℃以 1600×g 转速离心 60 分钟 6. 小心除去上清液，不要干扰沉淀(注：沉淀的多少并不一定代表病毒数量，沉淀更多的是 细胞培养基中的血清蛋白及部分基因组 DNA。若沉淀量不明显，则残留少量液体后再 重悬) 7. 将病毒沉淀完全重悬于原来体积的 1/10〜1/20 或所需的培养基（无血清和抗生素）中， 轻轻上下吹打混匀 8. 分装并储存在-80 ℃直到使用（注：浓缩液使用前无菌 0.45µm 过滤除菌）； 【注意事项】 1. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 2. 本品为非无菌产品，因其成份较为粘稠无法较好过滤。
HP高效电转染缓冲液-100ml
基本售价：2310.00元
HP Electroporation Solution【保存条件】 4℃保存 6 个月 【概述】 本品是通用型电转染过程中的缓冲液，可用于 DNA、siRNA 及蛋白等细胞转染，可显 著提高细胞转染效率及细胞存活率，适用于常见各种细胞类型，与所有电转仪器兼容。 【使用建议（仅供参考）】 1． 收集细胞（细胞应处于对数生长期）：用胰酶消化细胞，将细胞培养液吸入到 15ml 离 心管中，1000rpm 离心约 5min，弃上清。 2． 用不含血清的培养液洗涤一次，弃上清。 3． 取 2-10μg 质粒加入到 100μl 电转缓冲液中，充分混匀。 4． 用 100μl 混有质粒的电转缓冲液充分溶解细胞，转入 0.2cm 电转导入杯中。（每 5×105 个细胞使用约 20μl 电转缓冲液） 5． 将电转导入杯放入样品槽中，释放电脉冲，电击参数按电容 1000µF，电压 150-500 V， 间隔 20V 取值，取得最佳效果。（具体方案依照使用仪器设备的要求为准） 6． 立即取出电击杯，分别用一次性吸管将混和液转移至加有完全培养基的一次性细胞培 养瓶中，放入细胞培养箱中培养。 【注意事项】 1. 注意无菌操作，尽量避免污染。 2. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
HP高效电转染缓冲液
基本售价：580.00元
HP Electroporation Solution【保存条件】 4℃保存 6 个月 【概述】 本品是通用型电转染过程中的缓冲液，可用于 DNA、siRNA 及蛋白等细胞转染，可显著提高细胞转染效率及细胞存活率，适用于常见各种细胞类型，与所有电转仪器兼容。 【使用建议（仅供参考）】 1． 收集细胞（细胞应处于对数生长期）：用胰酶消化细胞，将细胞培养液吸入到 15ml 离心管中，1000rpm 离心约 5min，弃上清。 2． 用不含血清的培养液洗涤一次，弃上清。 3． 取 2-10μg 质粒加入到 100μl 电转缓冲液中，充分混匀。 4． 用 100μl 混有质粒的电转缓冲液充分溶解细胞，转入 0.2cm 电转导入杯中。（每 5×105个细胞使用约 20μl 电转缓冲液） 5． 将电转导入杯放入样品槽中，释放电脉冲，电击参数按电容 1000µF，电压 150-500 V， 间隔 20V 取值，取得最佳效果。（具体方案依照使用仪器设备的要求为准） 6． 立即取出电击杯，分别用一次性吸管将混和液转移至加有完全培养基的一次性细胞培养瓶中，放入细胞培养箱中培养。 【注意事项】 1. 注意无菌操作，尽量避免污染。 2. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
2×Bis-Tris 蛋白电泳上样缓冲液（含DTT）
基本售价：80.00元
Bis-Tris Sample buffer,2×(with DTT)【保存条件】 -20℃避光保存，有效期 1 年。建议分装冻存，避免反复冻融。 【概述】 2×NeoPAGE 蛋白电泳上样缓冲液可保护蛋白质在样品制备步骤中免受热降解，并在NeoPAGE 凝胶电泳运行期间防止 pH 值变化。一些蛋白质对在电泳期间温度波动引起的 pH变化敏感，优化后的上样缓冲液组分可防止在电泳之前的样品加热过程中以及电泳过程中蛋白质降解。SDS 可与蛋白质结合使蛋白质-SDS 复合物上带有大量的负电荷，这时蛋白质本身的电荷完全被 SDS 掩盖，消除了各种蛋白质本身电荷的差异；SDS 还可以断开分子内和分子间的氢键，破坏蛋白质分子的二级和三级结构。DTT 可以断开半胱氨酸残基之间的二硫键，破坏蛋白质结构，消除了蛋白结构之间的差异。最终无电荷及结构上差异的蛋白（亚单位），电泳速度只是与其分子量大小有关。上样缓冲液的跟踪染料为考马斯亮蓝 G-250（蓝色），用于跟踪电泳的进度。 【使用建议】 1. 使用前请室温完全解冻上样缓冲液并摇匀。 2. 请按每 10μl 蛋白样品加入 10μl 上样缓冲液的比例(两倍稀释)来使用。如果蛋白样品浓度过高，可用双蒸水稀释。 3. 混匀后，90-100℃水浴加热 5-10 分钟，使蛋白变性。 4. 冷却至室温后，10000-14000rpm 离心 2-5 分钟，取上清直接上样电泳即可。 【注意事项】 1. 为了您的安全与健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
RNA Chill RNase灭活试剂(25×)-10ml
基本售价：2700.00元
RNA Chill【保存条件】 -20℃保存一年 【概述】 RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)设计用于代替 DEPC 用于分子生物学试剂，可用于与 DEPC 不兼容的溶液（例如 Tris 或 MOPS 缓冲液）、不能高压灭菌的溶液以及酶促反应中的 无酶处理。 当酶学实验中试剂用 RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)处理时，未观察到以下各类酶促反 应受到抑制（包括但不限于）：T7、T3 和 SP6 RNA 聚合酶，体外转录； MMLV 和 AMV， 逆转录（42°C）；PCR 实验的 Taq 酶。 【操作方法】 1. 在待处理的缓冲液或溶液中将 RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)稀释至终浓度 1×(如 10ml 待处理溶液中加入 RNA Chill(25×) 0.4ml)，并充分混合。 2. 将混合物在 60°C 下孵育 10-20 分钟，然后冷却至室温。然后缓冲液/溶液即可用于 RNA 分离和分析。处理过的溶液可以在室温、4°C 或–20°C 下储存直至使用。 3. 为消除初始处理后可能出现的任何 RNase 污染，可将重复使用后的处理过的溶液重新加 热至 60°C 10-20 分钟。 【注意事项】 1. RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)在高于 45°C 时具有活性，但高于此温度孵育的反应中可能会使某些酶 失活。 因此，在加入某些酶之前用 RNA Chill(25×)试剂处理反应缓冲液(Taq 酶等耐高温酶除外)。 2. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
RNA Chill RNase灭活试剂(25×)
基本售价：310.00元
RNA Chill【保存条件】-20℃保存一年 【概述】RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)设计用于代替 DEPC 用于分子生物学试剂，可用于与DEPC 不兼容的溶液（例如 Tris 或 MOPS 缓冲液）、不能高压灭菌的溶液以及酶促反应中的无酶处理。当酶学实验中试剂用 RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)处理时，未观察到以下各类酶促反应受到抑制（包括但不限于）：T7、T3 和 SP6 RNA 聚合酶，体外转录； MMLV 和 AMV，逆转录（42°C）；PCR 实验的 Taq 酶。 【操作方法】1. 在待处理的缓冲液或溶液中将 RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)稀释至终浓度 1×(如 10ml待处理溶液中加入 RNA Chill(25×) 0.4ml)，并充分混合。2. 将混合物在 60°C 下孵育 10-20 分钟，然后冷却至室温。然后缓冲液/溶液即可用于 RNA分离和分析。处理过的溶液可以在室温、4°C 或–20°C 下储存直至使用。3. 为消除初始处理后可能出现的任何 RNase 污染，可将重复使用后的处理过的溶液重新加热至 60°C 10-20 分钟。 【注意事项】1. RNA Chill RNase 灭活试剂(25×)在高于 45°C 时具有活性，但高于此温度孵育的反应中可能会使某些酶失活。 因此，在加入某些酶之前用 RNA Chill(25×)试剂处理反应缓冲液(Taq 酶等耐高温酶除外)。2. 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。
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